Questo studio dimostra che il fungo associato alle radici Kosakonia oryziphila NP19, isolato dalle radici del riso, è un promettente biopesticida e agente biochimico per la promozione della crescita delle piante, utile per il controllo del brusone del riso. Esperimenti in vitro sono stati condotti su foglie fresche di piantine di riso aromatico Khao Dawk Mali 105 (KDML105). I risultati hanno mostrato che NP19 ha inibito efficacemente la germinazione dei conidi fungini del brusone del riso. L'infezione fungina è stata inibita in tre diverse condizioni di trattamento: inoculazione del riso con NP19 e conidi fungini; inoculazione fogliare simultanea con NP19 e conidi fungini; e inoculazione fogliare con conidi fungini seguita da trattamento con NP19 30 ore dopo. Inoltre, NP19 ha ridotto la crescita delle ife fungine del 9,9-53,4%. Negli esperimenti in vaso, NP19 ha aumentato l'attività della perossidasi (POD) e della superossido dismutasi (SOD) rispettivamente dal 6,1% al 63,0% e dal 3,0% al 67,7%, indicando un potenziamento dei meccanismi di difesa delle piante. Rispetto ai controlli non infetti da NP19, le piante di riso infette da NP19 hanno mostrato un aumento del contenuto di pigmenti dallo 0,3% al 24,7%, del numero di chicchi interi per pannocchia del 4,1%, della resa di chicchi interi del 26,3%, dell'indice di massa della resa del 34,4% e del contenuto del composto aromatico 2-acetil-1-pirrolina (2AP) del 10,1%. Nelle piante di riso infette sia con NP19 che con blastovirus, gli aumenti sono stati rispettivamente dello 0,2% al 49,2%, del 4,6%, del 9,1%, del 54,4% e del 7,5%. Esperimenti di campo hanno dimostrato che le piante di riso colonizzate e/o inoculate con NP19 hanno mostrato un aumento del numero di chicchi interi per pannocchia del 15,1-27,2%, una resa in chicchi interi del 103,6-119,8% e un contenuto di 2AP del 18,0-35,8%. Queste piante di riso hanno anche mostrato una maggiore attività SOD (6,9-29,5%) rispetto alle piante di riso infette da brusone non inoculate con NP19. L'applicazione fogliare di NP19 dopo l'infezione ha rallentato la progressione della lesione. Pertanto, K. oryziphila NP19 si è dimostrata un potenziale agente biologico e biopesticida promotore della crescita delle piante per il controllo del brusone del riso.
Tuttavia, l'efficacia dei fungicidi è influenzata da molti fattori, tra cui la formulazione, i tempi e le modalità di applicazione, la gravità della malattia, l'efficacia dei sistemi di previsione delle malattie e l'emergere di ceppi resistenti ai fungicidi. Inoltre, l'uso di fungicidi chimici può causare tossicità residua nell'ambiente e rappresentare un rischio per la salute degli utilizzatori.
Nell'esperimento in vaso, i semi di riso sono stati sterilizzati in superficie e fatti germinare come descritto sopra. Sono stati quindi seminati con K. oryziphila NP19 e trapiantati in contenitori per piantine. Le piantine sono state incubate per 30 giorni per consentire la fuoriuscita delle piantine di riso. Le piantine sono state quindi trapiantate in vaso. Durante il processo di trapianto, le piante di riso sono state fertilizzate per prepararle all'infezione con il fungo che causa il brusone del riso e per testarne la resistenza.
In un esperimento sul campo, i semi germinati infettati da Aspergillus oryzae NP19 sono stati trattati con il metodo descritto sopra e divisi in due gruppi: semi infettati da Aspergillus oryzae NP19 (RS) e semi non infetti (US). I semi germinati sono stati piantati in vassoi con terreno sterilizzato (una miscela di terreno, lolla di riso bruciata e letame in un rapporto in peso di 7:2:1) e incubati per 30 giorni.
Una sospensione di conidi di K. oryziphila è stata aggiunta al riso R e, dopo 30 ore di incubazione, sono stati aggiunti 2 μl di K. oryziphila NP19 nello stesso punto. Tutte le piastre Petri sono state incubate a 25 °C al buio per 30 ore e poi incubate sotto illuminazione continua. Ogni gruppo è stato replicato tre volte. Dopo 72 ore di incubazione, le sezioni vegetali sono state esaminate e sottoposte a microscopia elettronica a scansione. In breve, le sezioni vegetali sono state fissate in soluzione salina tamponata con fosfato contenente glutaraldeide al 2,5% (v/v) e disidratate in una serie di soluzioni etanoliche. I campioni sono stati essiccati al punto critico con anidride carbonica, quindi rivestiti con oro e osservati al microscopio elettronico a scansione per 15 minuti.
Data di pubblicazione: 13-10-2025